دوره 9، شماره 17 - ( بهار و تابستان 1400 )
جلد 9 شماره 17 صفحات 122-114 |
برگشت به فهرست نسخه ها
Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
Tafazoli M, Hosseini Nasr S M, Jalilvand H, Tafazoli M. (2021). Micropropagation of Chestnut (Castanea sativa Mill.) Affected by Plant Growth Regulators under In Vitro Conditions. Ecol Iran For. 9(17), 114-122. doi:10.52547/ifej.9.17.114
URL: http://ifej.sanru.ac.ir/article-1-288-fa.html
URL: http://ifej.sanru.ac.ir/article-1-288-fa.html
تفضلی مهرسده، حسینی نصر سید محمد، جلیلوند حمید، تفضلی محیا. ریزازدیادی گونه شاه بلوط (Castanea sativa Mill.) تحت تأثیر تنظیم کننده های رشد گیاهی در شرایط درون شیشه ای بوم شناسی جنگل های ایران (علمی- پژوهشی) 1400; 9 (17) :122-114 10.52547/ifej.9.17.114
1- گروه علوم و مهندسی جنگل، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی ساری
چکیده: (3129 مشاهده)
گونه شاه بلوط به عنوان یک گونه جنگلی بومی و ارزشمند در برخی از رویشگاه های جنگلی استان گیلان ظاهر می شود که به دلیل فقدان زادآوری طبیعی و وجود مشکلات اقتصادی- اجتماعی و همچنین بیماریهای زنگزدگی و سوختگی، مساحت توده های آن در حال کاهش است؛ لذا ازدیاد غیرجنسی آن از طریق روشهای کشت بافت می تواند در حفاظت از این گونه مؤثر بوده و از انقراض آن جلوگیری نماید. مطالعه حاضر با هدف استفاده از روش ریزازدیادی جهت تولید گیاهچه کامل شاه بلوط و شناسایی بهترین ریزنمونه و تنظیم کننده رشد گیاهی انجام شد. بدین منظور ابتدا بذور از رویشگاه ویسرود جمع آوری، ضدعفونی و در آب جوش خیسانده شد و در محیط کشت B5 کشت و پس از سبز شدن از بذور جوانه زده ریزنمونه تهیه شد. ریزنمونه های برگ، ساقه و ریشه از گیاهچه های درون شیشه ای شاه بلوط تحت القاء سیتوکینین ها (TDZ و BA) با غلظت های 0/02، 0/2، 1 و 2 میلی گرم در لیتر و اکسین ها (IBA، NAA و IAA) با غلظت های 0/1، 0/2، 1 و 2 میلی گرم در لیتر در محیط کشت B5 قرار گرفتند. نتایج نشان داد که بهترین واکنش از ریزنمونه ی برگ حاصل شده و TDZ (0/2 میلی گرم در لیتر) و IBA (2 میلی گرم در لیتر) به ترتیب بیشترین درصد تولید کالوس- شاخه (32/4 درصد) و ریشه زایی (80 درصد) را داشتند. زندهمانی گیاهچه های بدست آمده در محیط بیرون از آزمایشگاه 80 درصد بود. با توجه به اهمیّت گونه شاه بلوط از نظر اقتصادی و زیست محیطی، نتایج این مطالعه می تواند در راستای کاربرد مدیریت احیایی جهت حفاظت، توسعه و جلوگیری از انقراض این گونه مؤثر واقع شود.
فهرست منابع
1. Aldaghi, M., K. Espahbodi, A. Salimi and R. Khaksar. 2015. Selecting appropriate tissue sample and optimal maintenance conditions for enzymatic investigations on velvet Maple (Acer velutinum Boiss.). Ecology of Iranian Forests, 3(5): 11-19 (In Persian).
2. Arrobas, M., S. Afonso and M.A. Rodrigues. 2018. Diagnosing the nutritional condition of chestnut groves by soil and leaf analyses. Scientia Horticulturae, 228: 113-121. [DOI:10.1016/j.scienta.2017.10.027]
3. Asnaashari, M. and M. ZokaeiKhosroshahi. 2010. Comprehensive guide to plant tissue culture. Bu-Ali Sina University Press, Hamedan, Iran. 467 pp (In Persian).
4. Baskin, C.C., S.E. Meyer and J.M. Baskin. 1995. Two type morphophysiological dormancy in seeds of two genera Osmorhiza and Erythronium with an Arcto-Tertiary distribution pattern. American Journal of Botany, 82: 293-298. [DOI:10.1002/j.1537-2197.1995.tb12633.x]
5. Bounous, G. 2005. The chestnut: a multipurpose resource for the millennium. Acta horticulturae, 693: 33-40. [DOI:10.17660/ActaHortic.2005.693.1]
6. Corredoira, E., A.M. Vieitez and A. Ballester. 2001. Somatic embryogenesis from leaf explants of chestnut. Abstract Cost G4, Monte Verita, Switzerland, 63 pp.
7. Dirr, M.A. and Jr. Heuser Charles. 1987. The reference manual of woody plant propagation, 239 pp.
8. Dodds, J.H. 1984. Experiments in plant tissue culture. Cambridge university press, 36-50.
9. Emam, M., A. Ghamarizare, K. Espahbodi, T.S. Naraghi and S.H. Shahrzad. 2012. Micropropagation of forest tree of Sorbus aucuparia.L by bud culture of mature plants. Iranian Journal of Rangelands and Forests Plant Breeding and Genetic Research, 19(2): 263-273 (In Persian).
10. Farsi. M., J. Zolali. 2004. Principles of plant biotechnology. 1st edn, Ferdowsi University of Mashhad Press, Mashhad, Iran, 554 pp.
11. Fathi, Gh and B. Esmaeilpour. 2001. Plant growth regulator, principles and application (translation). 1st edn., University of Mashhad Press, Mashhad, Iran. 228 pp.
12. Gamborg, O.L., R.A. Muller and K. Ojima. 1968. Nutrient requirement of suspension cultures of soybean root cells. Experimental Cell Research. 50: 151-158 [DOI:10.1016/0014-4827(68)90403-5]
13. Gasper, T. and M. Coumans. 1987. Root formation. In: JM Bonga and DJ Durzan (eds) Cell and tissue culture in forestry. Vol 2, Specific principles and methods: Growth and developments, Martinus Nijhoff Publishers, 202-217. [DOI:10.1007/978-94-009-4484-8_10]
14. Ghezi, E., S.A. Khodaparast and M. Niknejad Kazempoor. 2010. Study on the morphological and virulence variability of Cryphonectria Parasitica causal agent of chestnut blight in Guilan province. Iranian Journal of plant pathology, 1(45): 25-35 (In Persian).
15. Goncalves, J.C., G. Diogo and S. Amancio. 1998. In vitro propagation of chestnut (Castanea sativa × C. crenata): effects of rooting treatments on plant survival, peroxidase activity and anatomical changes during adventitious root formation. Scientia Horticulturae, 72: 265-275. [DOI:10.1016/S0304-4238(97)00136-2]
16. Hedayti, M.A. 2004. Investigation of Chestnut tree silviculture (Castanea sativa Mill.) on Guilan province and its propagation and cultivation. Ph.D. dissertation in Forestry, Faculty of Natural Resources, University of Tehran, Tehran, Iran, 200 pp (In Persian).
17. Hou, J.W., S.J. Guo and G.Y. Wang. 2010. Effects of in vitro subculture on the physiological characteristics of adventitious root formation in microshoots of Castanea mollissima cv. 'yanshanhong'. Journal of Forestry Research, 21(2): 155-160. [DOI:10.1007/s11676-010-0025-z]
18. Iranmanesh, Y., S. Aliahmad Korori, F. Emadian, D. Azadfar and K. Espahbodi. 2005. The role of biotechnology science in forestry management, conservation of forests in sustainable management conference, Research Institute of Forests and Rangelands. Tehran, Iran.
19. Jiang, K. M., C.G. Cheng, M. Ran, M, Y.G. Lu and Q.L. Wu. 2018. Preparation of a biochar with a high calorific value from chestnut shells. New Carbon Materials, 33(2): 183-187. [DOI:10.1016/S1872-5805(18)60333-6]
20. Joshi, J., P. Bishit and K. Sharma. 2003. In vitro clonal propagation of mature Eucallyptus grandis * E. terticornis, Silvae Genetica, 52: 110-113.
21. Ledbetter, D.L. and J.E. Preece. 2004. Thidiazuron stimulates adventitious shoot production from Hydrangea quercifolia Bartr. leaf explants. Sci. Hortic, 101: 121-126 [DOI:10.1016/j.scienta.2003.09.014]
22. Lee, S.W. 2005. Thidiazuron in the improvement of bananamicropropagation. Acta Hortic, 692: 67-74. [DOI:10.17660/ActaHortic.2005.692.7]
23. Mota, M., T. Pinto, A. Vilela, T. Marques, A. Borges, J. Caço, J. Ferreira-Cardoso, F. Raimundo and J. Gomes-Laranjo. 2018. Irrigation positively affects the chestnut's quality: The chemical composition, fruit size and sensory attributes. Scientia Horticulturae, 238: 177-186. [DOI:10.1016/j.scienta.2018.04.047]
24. Murashige, T. and F. Skoog. 1962. A revised medium for rapid growth and bioassay with tobacco tissue cultures, Physiologia Plantarum, 15: 473-497 [DOI:10.1111/j.1399-3054.1962.tb08052.x]
25. Naraghi, T.S. 2003. Micropropagation of Chestnut (Castanea sativa) by shoot culture. Iranian Journal of Rangelands and Forests Plant Breeding and Genetic Research, 10(10): 69-89 (In Persian).
26. Norouzi Haroni, N. and M. Tabari Kouchsaraei. 2014. The effect of hydropriming, halopriming and boiling water on seed germination of black locust (Robinia pesudoacasia L.). Ecology of Iranian Forests, 2(3): 76-88 (In Persian).
27. Osterc, G., M. Zavrl Fras, T. Vodenik and Z. Luthar. 2005. The propagation of chestnut (Castanea sativa Mill.) nodal explants. Acta agriculturae Slovenica, 85(2): 411-418.
28. Robichaud, R.L., V.C. Lessard and S.A. Merkle. 2004. Treatments affecting maturation and germination of American chestnut somatic embryos. Journal of plant physiology, 161(8): 957-969. [DOI:10.1016/j.jplph.2004.03.003]
29. Roussos, P., A. Archimandriti and I. Beldekou. 2016. Improving in vitro multiplication of juvenile European chestnut (Castanea sativa Mill) explants by the use of growth retardants. Scientia Horticulturae, 198: 254-256. [DOI:10.1016/j.scienta.2015.11.039]
30. Rowse, H.R. 1995. Drum priming - A non-osmotic method of priming seeds. Seed Sci. Technol, 24: 281-294.
31. San, B., M. Sezgin, H. Dumanoglu and A.I. Koksal. 2007. Somatic Embryogenesis from Immature Cotyledons of Some European Chestnut (Castanea sativa Mill.) Cultivars. Turk J Agric For, 31: 175-179.
32. Sanchez, M.C., M.C. San Jose, E. Ferro, A. Ballester and A.M. Vieitez. 1997. Improving micropropagation conditions for adult-phase shoots of chestnut. Journal of Horticultural Science, 72 (3): 433-443. [DOI:10.1080/14620316.1997.11515531]
33. Singh, K., K.P. Singh and L. Susheel Kumar. 1984. Seedling growth and vigor responses of some Indian medical plants to certain physical and chemical treatments. Indian journal of plant physiology, 27: 295-299
34. Skoog, F. and C.O. Miller. 1967. Chemical regulation of growth and organ formation in plant tissues culture in vitro. Symposia of the Society for Experimental Biology, 11: 118-140.
35. Sutter, E.G. 1996. General laboratory requirements, media and sterilization methods. In: Trigiano, R.N. and D.J. Gray. (eds.) plant tissue culture concepts and laboratory exercises. 11-25 pp. New York, USA.
36. Tetsumura, T. and K. Yamashita. 2004. Micropropagation of Japanese chestnut (Castanea crenata Seib. et Zucc.) seedlings. Hortscience, 39: 1684-1687. [DOI:10.21273/HORTSCI.39.7.1684]
37. Vieitez, A.M. and M.L. Vieitez. 1983. Castanea sativa plantlets proliferated from axillary buds cultivated In vitro. Scientia Horticulturae, 18(4): 343-35. [DOI:10.1016/0304-4238(83)90016-X]
38. Wang, H.M., H.M. Liu, W.J. Wang and Y.G. Zu. 2008. Effects of Thidiazuron, basal medium and light quality on adventitious shoot regeneration from in vitro cultured stem of Populus alba- P. berolinensis. Journal of Forest Research, 19: 257-259. [DOI:10.1007/s11676-008-0042-3]
39. Warrang, E.I., M.S. Lesney and D.L. Rockwood. 1990. Micropropagation of field tested superior E. garndis hybrids. New forests, 4: 67-79. [DOI:10.1007/BF00119001]
40. Williams, E. G. and G. Maheswaran. 1986. Somatic embryogenesis: factors influencing coordinated behavior of cell as an embryogenic group. Ann Bot, 57: 443-462 [DOI:10.1093/oxfordjournals.aob.a087127]
41. Wimp, G.M., W.P. Young, S.A. Woolbright, P. Keim and T.G. Whitham. 2004. Conserving plant genetic diversity for dependent animal communities. Ecology Letters, 7: 776-780. [DOI:10.1111/j.1461-0248.2004.00635.x]
42. Zabihi, H., S.M. Hosseini Nasr, N. Babaeyan Jelodar and H. Jalilvand. 2008. Tissue culture of Ulmus glabra Hudson: The effects of culture media, explants and their harvest times. Journal of Agricultural Science and Natural Resources, 15(4): 15-21 (In Persian).
43. Zarafshar, M., M. Akbarinia, A. Sattarian, H. Yousefzade and M. Taieby. 2017. Effect of light conditions on chestnut (Castanea Sativa) leaf morphology. Journal of Environmental sciences and technology, 18(2): 95-106 (In Persian).
ارسال پیام به نویسنده مسئول
| بازنشر اطلاعات | |
 |
این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |
