دوره 9، شماره 18 - ( پاییز و زمستان 1400 )
جلد 9 شماره 18 صفحات 42-34 |
برگشت به فهرست نسخه ها
Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
rostamikia Y, Tabari Kouchaksaraei , M, Asgharzadeh A, Rahmani A. (2021). Effects of IBA and Mycorrhizal fungi inoculation on rooting and growth of the semi- hardwood cuttings of Corylus avellana L.. ifej. 9(18), 34-42. doi:10.52547/ifej.9.18.34
URL: http://ifej.sanru.ac.ir/article-1-343-fa.html
URL: http://ifej.sanru.ac.ir/article-1-343-fa.html
رستمی کیا یونس، طبری کوچکسرایی مسعود، اصغرزاده احمد، رحمانی احمد. تأثیر تیمارهای ایندول بوتیریک اسید و تلقیح قارچ بر ریشهزایی و صفات رویشی قلمه نیمهخشبی فندق جنگلی (Corylus avellana L.) بوم شناسی جنگل های ایران (علمی- پژوهشی) 1400; 9 (18) :42-34 10.52547/ifej.9.18.34
بخش تحقیقات جنگل و مرتع، مرکز تحقیقات و آموزش کشاورزی و منابع طبیعی استان اردبیل، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، اردبیل، ایران.
چکیده: (2411 مشاهده)
مقدمه و هدف: فندق جنگلی(Corylus avellana L.)گیاهی است سخت ریشه زا و از این رو تکثیر آن با روش های متداول غیر جنسی تقریباامکان پذیر نمی باشد. هدف از این تحقیق تعیین تأثیر اکسین و تلقیح قارچهای میکوریزی بر کالوس،ریشهزایی و صفات رویشی قلمههای فندق جنگلی است.
مواد و روش‌ها: قلمههای نیمهخشبی فندق دراوایل تیرماه از جنگلهای ارسباران (رویشگاه مکیدی) جمعآوری و باغلظتهای صفر، 2000، 1000، 500 و 3000 میلیگرم در لیتر IBA تیمار و سپس با قارچهای Glomus intraradices وTrichoderma harzianum تلقیح شدند. قلمهها در بستر کاشت مخلوط ماسه-پرلیت (1:1) در گلخانه کشت و 70 روز پس از کاشت، صفات کالوسزایی، ریشهزایی، تعداد ریشه، وزن خشک ریشه، وزن خشک کل نهال، طول نهال، سطحبرگ و درصد کلنیزاسیون ریشه با قارچهای مورد مطالعه اندازهگیری شدند.
یافته‌ها: در قلمه های شاهد (بدون اعمال هورمون و قارچ) و قلمههایی که در غلظت 500 میلی گرم در لیتر هورمونIBA همراه با و بدون قارچ G. intraradicesو T. harzianum تیمار شدند هیچ کالوسی تشکیل نشد. بیشترین کالوسزایی (34/3 درصد)، ریشهزایی(27/2درصد)، تعداد ریشه (2/58عدد)، وزن ریشه (35/0 گرم)، وزن خشک کل نهال (3/39 گرم)، طول نهال(12/32سانتیمتر)، سطحبرگ (29/13 سانتیمتر مربع) و کلنیزاسیون ریشه (28/7 درصد) در غلظت 2000 میلیگرم در لیتر IBA در تلقیح با قارچ G. intraradices مشاهده شد.
نتیجه‌گیری: مطلوب ترین روش تکثیر رویشی فندق، جمع آوری قلمه های پاجوش یکساله در تیرماه و تیمار با تنظیمکننده رشد IBA (غلظت 2000 میلی گرم در لیتر) در ترکیب با قارچ G. intraradices است.
مواد و روش‌ها: قلمههای نیمهخشبی فندق دراوایل تیرماه از جنگلهای ارسباران (رویشگاه مکیدی) جمعآوری و باغلظتهای صفر، 2000، 1000، 500 و 3000 میلیگرم در لیتر IBA تیمار و سپس با قارچهای Glomus intraradices وTrichoderma harzianum تلقیح شدند. قلمهها در بستر کاشت مخلوط ماسه-پرلیت (1:1) در گلخانه کشت و 70 روز پس از کاشت، صفات کالوسزایی، ریشهزایی، تعداد ریشه، وزن خشک ریشه، وزن خشک کل نهال، طول نهال، سطحبرگ و درصد کلنیزاسیون ریشه با قارچهای مورد مطالعه اندازهگیری شدند.
یافته‌ها: در قلمه های شاهد (بدون اعمال هورمون و قارچ) و قلمههایی که در غلظت 500 میلی گرم در لیتر هورمونIBA همراه با و بدون قارچ G. intraradicesو T. harzianum تیمار شدند هیچ کالوسی تشکیل نشد. بیشترین کالوسزایی (34/3 درصد)، ریشهزایی(27/2درصد)، تعداد ریشه (2/58عدد)، وزن ریشه (35/0 گرم)، وزن خشک کل نهال (3/39 گرم)، طول نهال(12/32سانتیمتر)، سطحبرگ (29/13 سانتیمتر مربع) و کلنیزاسیون ریشه (28/7 درصد) در غلظت 2000 میلیگرم در لیتر IBA در تلقیح با قارچ G. intraradices مشاهده شد.
نتیجه‌گیری: مطلوب ترین روش تکثیر رویشی فندق، جمع آوری قلمه های پاجوش یکساله در تیرماه و تیمار با تنظیمکننده رشد IBA (غلظت 2000 میلی گرم در لیتر) در ترکیب با قارچ G. intraradices است.
فهرست منابع
1. Abedi, R. 2019. Effect of stand structural characteristics on natural regeneration of Acer Campestre L. in Arasbaran forest. Ecology of Iranian Forests, 7(19): 46-53. [DOI:10.29252/ifej.7.13.46]
2. Ahmadloo, F., M. Tabari Kouchaksaraei and GH. R. Goodarzi. 2016. Effects of IBA, bacterial and mycorrhizal treatments on the rooting of Crataegus pseudohetrophylla Pojark. Cuttings. Iranian Journal of Forest and Poplar Research, 24(2): 344-355.
3. Aygun, A., V. Erdogan and E. Bozkurt. 2009. Effect of some pre-treatments on seed germination of Turkish Hazel (Corylus colurna L.). Acta Horticulture, 845: 203-206. [DOI:10.17660/ActaHortic.2009.845.27]
4. Bassil, N.V., W.M. Proebsting, L.M. Moore and D.A. Lightfoot. 1991. Propagation of hazelnut stems cuttings using Agrobacterium rhizogenes. Horticultural Science, 26(8): 1058-1060. [DOI:10.21273/HORTSCI.26.8.1058]
5. Bombeli, J., G. Zuccherelli, S. Zuccherelli and V. Capaccio. 2002. An investigation of vegetation types and Plantation Structural with Hazelnut, Oak, and Beach in Caldra, Italy. The Malaysian Forester, 66(1): 58-69.
6. Cristofori, V., Y. Rouphael and E. Rugini. 2010. Collection time, cutting age, IBA and putrescine effects on root formation in Corylus avellana L. cuttings. Scientia Horticulturae, 124(2): 189-194. [DOI:10.1016/j.scienta.2009.12.034]
7. Clark, J.R., G.E. Hemery and P.S. Savill. 2008. Early growth and form of common walnut (Juglans regia L.) in mixture with tree and shrub nurse species in southern England. Forestry, 81(5): 631-644. [DOI:10.1093/forestry/cpn036]
8. Contessa, C., N. Valentini and R. Botta. 2011. Decreasing the concentration of IBA or combination with ethylene inhibitors improve bud retention in semi-hardwood cuttings of hazelnut cultivar Tonda. Scientia Horticulturae, 131: 103-106. [DOI:10.1016/j.scienta.2011.09.029]
9. Contessa, C., N. Valentini, R. Botta and M. Corte. 2014. Investigation on effects of IBA treatment and ethylene inhibitors on the rooting and bud retention of semi- hardwood cutting from Tonda gentile delle Langhe Hazelnut cuture. Acata Horticulture, 1052: 151-156. [DOI:10.17660/ActaHortic.2014.1052.19]
10. Delgado, T., R. Malheiro, J.A. Pereira and E. Ramalhosa. 2010. Hazelnut (Corylus avellana L.) kernels as a source of antioxidants and their potential in relation to other nuts. Industrial Crops and Products, 32: 621-626. [DOI:10.1016/j.indcrop.2010.07.019]
11. Ercisli, S. and P.E. Read. 2001. Propagation of hazelnut by softwood and semi-hardwood cuttings under Nebraska condition. Acta Horticulturae, 556: 275-279. [DOI:10.17660/ActaHortic.2001.556.40]
12. Erdogan, V. and D.C. Smith. 2005. Effect of tissue removal and hormone application on rooting of hazelnut layers. Horticultural Science, 40: 1457-1460. [DOI:10.21273/HORTSCI.40.5.1457]
13. Ersoy, N. and M. Aydin. 2008. The effect of some hormone and humidity levels on rooting of Mahaleb (Prunus mahaleb) soft- wood top cutting. Suleyman Demired Universitesi Ziraat Fakultesi Degisi, 3(1): 32-41.
14. Fukuda, T., H. Ito and T. Yoshida. 2003. Antioxidant polyphenols from walnuts (Juglans regia L.). Photochemistry, 63: 795-801. [DOI:10.1016/S0031-9422(03)00333-9]
15. Ghirardello, D., C. Contessa, N. Valentini, G. Zeppa, L. Rolle, V. Gerbi and R. Botta. 2013. Effect of storage conditions on chemical and physical characteristics of hazelnut (Corylus avellana L.). Postharvest Biology and Technology, 81: 37- 43. [DOI:10.1016/j.postharvbio.2013.02.014]
16. Giovannetti, M. and B. Mosse. 1980. An evaluation of techniques for measuring vesicular arbuscular mycorrhizal infection in roots. New Phytology, 84: 489-500. [DOI:10.1111/j.1469-8137.1980.tb04556.x]
17. Hartmann, H.T., T. Hudson, D.E. Kester, E.K. Dale, J.R.F.T. Davies and R.L. Geneve. 2002. Plant Propagation: Principles and Practices. Prentice-Hall of London, 770 pp.
18. Henrique, A., E.N. Campinhos and S.Z. Depinho. 2006. Effect of plant growth regulators in rooting of Pinus cuttings. Brazilian Archives of Biology and Technology, 49: 189-196. [DOI:10.1590/S1516-89132006000300002]
19. Jull, L.G., S.L. Warren and F.A. Blazich. 1994. Rooting yoshino cryptomeria stem cutting as influenced by growth stage, branch order and IBA treatment. Scientia Horticulturae, 29(12): 1532-1535. [DOI:10.21273/HORTSCI.29.12.1532]
20. Kantarci, M. and M. Ayfer. 1994. Propagation of some important Turkish hazelnut varieties by cuttings. Acta Horticulturae, 351: 353-360. [DOI:10.17660/ActaHortic.1994.351.39]
21. Mossadegh, H. 1998. Silviculture. Tehran University press, 1th Ed., Tehran, 481 pp.
22. Mozaffarian, V. 2004. Trees and Shrubs of Iran. Farhang-e- Moaser Press, Tehran. 810 pp.
23. Nayagam, J. R. 2015. Sprouting Value Index: A New Concept in Evaluation of Rooting of Cuttings. Journal of Agricultural Research, 3(4): 139-142. [DOI:10.11648/j.ajep.20150406.11]
24. Sabeti, H. 1994. Forests, trees and shrubs of Iran. Tehran, University of science and Technology press: 810 (In Persian).
25. Santelices, R. and G. Palfner. 2010. Controlled Rhizogenesis and Mycorrhiza of Hazelnut (Corylus avellana) cutting with Black Truffle (Tuber melanosporm). Chilean journal of Agricultural Research, 70(2): 204-210. [DOI:10.4067/S0718-58392010000200003]
26. Scagel, C.F. 2001. Cultivar specific effects of mycorrhizal fungi on the rooting of miniature rose cuttings. Journal of Environmental Horticulture, 19(1): 15-20. [DOI:10.24266/0738-2898-19.1.15]
27. Scagel, C.F. 2004. Changes in cutting composition during early stages of adventitious rooting of miniature rose altered by inoculation with Arbuscular mycorrhizal fungi. Journal of the American Society for Horticultural Science, 129(5): 624-634. [DOI:10.21273/JASHS.129.5.0624]
28. Tamasloukht, M.B., N. Séjalon-Delmas, A. Kluever, A. Jaunean, C. Roux and G. Bécard. 2003. Cuttings of the Gisela cherry rootstock. Horticulture Technology, 19(2): 254-259.
29. Phillips, J.M. and D.S. Hayman. 1970. Improved procedure for clearing roots and staining parasitic and vesicular-arbuscular mycorrhizal fungi for rapid assessment of infection. Transactions of the British Mycological Society, 55: 158-161. [DOI:10.1016/S0007-1536(70)80110-3]
30. Wu, Q.S. 2011. Mycorrhizal efficacy of trifoliate orange seedlings on alleviating temperature stress. Plant. Soil and Environment, 57(10): 459-464. [DOI:10.17221/59/2011-PSE]
31. Wu, Q.R. and X. Xia. 2006. Arbuscular mycorrhizal fungi influence growth, osmotic adjustment and photosynthesis of citrus under well-watered and water stress conditions. Journal of Plant Physiology, 163: 417-425. [DOI:10.1016/j.jplph.2005.04.024]
32. Yang, Y., Q. Liu, C. Han, Y.Z. Qiao, X.Q. Yao and H.J. Yin. 2007. Influence of water stress and low irradiance on morphological and physiological characteristics of Picea asperata seedlings. Photosynthetica, 45: 613-619. [DOI:10.1007/s11099-007-0106-1]
33. Yazdian, F. and M.R. Marvi Mohajer. 2001. A study of oak forests in Arasbaran region. Iranian Journal of National Resources, 54(2): 153-165 (In Persian).
ارسال پیام به نویسنده مسئول
| بازنشر اطلاعات | |
 |
این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |
